ANTcryo高进孔率支持膜 :提升极限分辨率

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ANTcryoTM 应用案例

 

案例1:2022年2月8日,Science在线发表了中国科学院上海药物研究所徐华强/尹万超团队与济民可信邓俗俊团队合作的题为“Structures of the Omicron Spike trimer with ACE2 and an anti-Omicron antibody”的最新成果。该项工作中使用ANTcryoTM和UtrAuFoil两种支持膜分别揭示了Omicron突变株新冠病毒刺突蛋白与特异性治疗抗体JMB2002和受体ACE2结合的结构,最终分辨率分别为2.69和2.77 Å[13]

 

案例2:2022年3月28日,斯坦福大学Brian K. Kobilka团队在BioRxiv上发表了 “Calcineurin-fusion facilitates Cryo-EM Structure Determination of a Family A GPCR”,该项工作中冷冻电镜样品制备分别使用了ANTcryoTM和Quantifoil研究了β2肾上腺素能受体(β2AR)的不同状态,分别获得了3.49和3.95 Å的高分辨结构[6]

 

案例3:2020年2月,Cell上刊登了上海科技大学刘志杰团队发表的“Activation and Signaling Mechanism Revealed by Cannabinoid Receptor-Gi Complex Structures”,解析了CB1和CB2分别与G蛋白分子结合的冷冻电镜三维结构。该项工作中冷冻电镜样品制备使用的正是ANTcryoTM载网(ANTcryoTM的曾用名是CryoMatrix,最终分辨率分别是3.0 Å和2.9 Å[9]

图:CB1-G蛋白和CB2-G蛋白复合物的冷冻电镜结构[9]

 

纳境鼎新独有专利产品—ANTcryoTM孔阵列支持膜(非晶镍钛合金支持膜)(发明专利CN201810326897.5)[1],是冷冻单颗粒制样的升级方案。产品推出仅两年,已助力用户发表12篇高分论文,其中5篇发表在CNS上[2-13]。由于ANTcryoTM表现出如下优势,从而受到业界用户的广泛认可。

  • 提升分辨率

  • 提高制样成功率

  • 节约透射电镜机时

粒的吸附力上,ANTcryoTM支持膜比传统碳膜低了近20倍,从而提高了颗粒进孔率,减少了孔内颗粒的聚集,显著提高了制样成功率。同时,由于数据中可用颗粒的增多,节省了数据收集的时间。就去铁铁蛋白的数据来看,获得相同颗粒需要的透射电镜机时减少为传统碳膜的50%或更少[1]

 

图:去铁铁蛋白冷冻电镜照片[1] ANTcryoTM支持膜与传统碳膜相比,进孔率高颗粒密集,颗粒分散更少重叠,数据收集时间更短;颗粒边界清晰,获得的分辨率更高。

与传统碳膜相比,ANTcryoTM支持膜具有更好的导电性,降低电子束导致的样品漂移(BIM),从而获得更高的分辨率。用户实验表明在进一步推进分辨率时,高分辨的提升超过0.2 Å[1]

此外,与碳膜一样,ANTcryoTM支持膜也是一种非晶材料,适配电镜常规合轴校准需要,匹配电镜自动化数据采集流程。

可以在哪里买到?

表:现货型号

型号

载网材料

载网目数

   孔径

孔边缘间距

M01

    Au

   300

1.2   μm

  1.3   μm

M02

    Cu

   300

1.2   μm

  1.3   μm

M03

    Au

   400

1.2   μm

  1.3   μm

M04

    Au

   300

2.0   μm

  1.0   μm

ANTcryo的购买渠道有公众号(纳境科技)

网站(www.nanodim.cn)

订购邮箱(sales@nanodim.cn)

订购电话(+86 18811539262)

经销商镇江乐华科技有限公司(+86 0511-80780956)

References

[1]. 2020. Prog Biophys Mol Biol, Huang, X., et al., Amorphous nickel titanium alloy film: A new choice for cryo electron microscopy sample preparation.

[2]. 2021. Nat Commun, Kang, H., et al., Structural basis for recognition and regulation of arenavirus polymerase L by Z protein.

[3]. 2022. bioRxiv, Li, Z., et al., Cryo-EM structures reveal the activation and substrate recognition mechanism of human enteropeptidase.

[4]. 2022. Cell Discov, Wang, A., et al., Structure of infective Getah virus at 2.8 A resolution determined by cryo-electron microscopy.

[5]. 2022. Nat Commun, Wang, Q., et al., Structural basis of the ligand binding and signaling mechanism of melatonin receptors.

[6]. 2022. bioRxiv, Xu, J., et al., Calcineurin-fusion facilitates Cryo-EM Structure Determination of a Family A GPCR.

[7]. 2022. Nat Struct Mol Biol, Zhang, H., et al., Structure of human glycosylphosphatidylinositol transamidase.

[8]. 2021. Proc Natl Acad Sci U S A, Zhou, X., et al., Structural basis for ligand binding modes of CTP synthase.

[9]. 2020. Cell, Hua, T., et al., Activation and Signaling Mechanism Revealed by Cannabinoid Receptor-Gi Complex Structures.

[10]. 2021. Nature, Lin, S., et al., Structures of Gi-bound metabotropic glutamate receptors mGlu2 and mGlu4.

[11]. 2020. Science, Qiao, A., et al., Structural basis of Gs and Gi recognition by the human glucagon receptor.

[12]. 2020. Nature, Ruan, Z., et al., Structures of human pannexin 1 reveal ion pathways and mechanism of gating.

[13]. 2022. Science, Yin, W., et al., Structures of the Omicron spike trimer with ACE2 and an anti-Omicron antibody.

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